Physiological and biochemical changes during organogenesis and somatic embryogenesis of HBsAg-transgenic cherry tomato mutant;
Cambios bioquímicos y fisiológicos durante la organogenesis y embriogénesis somática del tomate cherry mutante transgénico HBsAg

Creators:Guan, Z-J; Department of Life Sciences, Yuncheng University, Yuncheng, Shanxi, 044000, P.R. China.
Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China.
State Key Laboratory of Vegetation and Environmental Change, Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100093, China., Lu, S-B; College of life sciences, Jiangxi Normal University, Nanchang, Jiangxi, 330022, P.R. China., Huo, Y-L; Centre of Biological and Chemical Experiment, Yuncheng University, Yuncheng, Shanxi, 044000, China., Guo, B; Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China., Guan, Z-P; College of Food Science, Shanxi Normal University, Linfen 04100, China., Wei, Y-H; Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China.
Descripción

Leaf explants of the HBsAg-transgenic cherry tomato (Solanum lycopersicum) mutant were cultured on Murashige and Skoog (MS) basal medium, supplemented with 1.0 mg/L 6-BA and 0.05 mg/L IAA for callus induction, to clarify the physiological and biochemical characteristics of morphogenesis development. Therefore, the physiological and biochemical changes during the development of organogenic shoots and somatic embryos in the mutant were studied. Superoxide dismutase (SOD) activities of the mutant had only one peak value on the 21st day. Peroxidase (POD) activities of the mutant declined less sharply since the explants were cultured. IAA oxidase activity of the mutant increased steadily until 42 days from culturing and then decreased sharply. Malondialdehyde (MDA) of the mutant showed a significant decreasing trend after 21 days from culturing. Growth rate of the mutant was at times lower than that of the control during its callus differentiation, and the soluble protein content of the mutant callus decreased from explant cultivation until the 28th day of culture. The mutant had greater values of chlorophyll a, carotenoid and Chlorophyll contents than the control after 14 days of culturing, and Chlorophyll b content of the mutant showed a declining trend. The electrical conductivity trend of the mutant was consistent with that in the control. It indicated that in terms of the organogenesis or somatic embryogenesis pattern, protein synthesis and catabolism were very active, and a number of antioxidant enzyme activities were consistent in the early development stages of the two regeneration systems. These findings were useful for the regeneration of the mutant.

Explantes foliares del mutante de tomate cherry (Solanum lycopersicum) transgénico-HBsAg fueron cultivados en medio basal Murashige y Skoog (MS), suplementado con 1,0 mg/L 6-BA y 0,05 mg/L ácido indol-acético (IAA) para inducción de callo, para clarificar las características fisiológicas y bioquímicas del desarrollo de la morfogénesis. Por lo tanto se estudiaron dichas características durante el desarrollo de tallos organogénicos y embriones somáticos en el mutante. La actividad de la superóxido dismutasa (SOD) del mutante solo alcanzó un valor pico luego de 21 días de cultivo. La actividad de la peroxidasa (POD) del mutante descendió menos abruptamente desde que los explantes fueron cultivados. La actividad de la IAA oxidasa del mutante se incrementó continuamente hasta los 42 días del explante, y luego se redujo abruptamente. El malonaldehido (MDA) del mutante mostró una tendencia significativa de descenso después de 21 días de cultivo. La tasa de crecimiento del mutante fue a veces menor que la del control durante la diferenciación de su callo, y el contenido de proteína soluble del callo mutante declinó desde el cultivo del explante hasta el día 28 del cultivo. El mutante tuvo mayores valores de contenidos de clorofila a, carotenoides y clorofila que el control después de 14 días de cultivo, y el contenido de clorofila b del mutante mostró una tendencia descendente. La tendencia de la conductividad eléctrica del mutante fue similar a la del control. Esto indicó que en términos del modelo de organogénesis o embriogénesis somática, la síntesis de proteínas y el catabolismo fueron muy activos, y un número de actividades enzimáticas antioxidantes fueron consistentes en los estados tempranos del desarrollo de los dos sistemas de regeneración. Estos resultados fueron útiles para la regeneración del mutante.

Metadatos destacados

Colecciones
Phyton, International Journal of Experimental Botany

Editor

FUNDACIÓN RÓMULO RAGGIO

Fuente

Phyton. Revista Internacional de Botánica Experimental; Vol 84, No 2 (2015); 351-357, Phyton, International Journal of Experimental Botany; Vol 84, No 2 (2015); 351-357

Citación

Guan, Z-J; Department of Life Sciences, Yuncheng University, Yuncheng, Shanxi, 044000, P.R. China. Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China. State Key Laboratory of Vegetation and Environmental Change, Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100093, China. et al., “Physiological and biochemical changes during organogenesis and somatic embryogenesis of HBsAg-transgenic cherry tomato mutant,” Archivo PPCT, consulta 1 de abril de 2026, http://archivoppct.caicyt.gov.ar/items/show/7606.

Dublin Core

Autor

Guan, Z-J; Department of Life Sciences, Yuncheng University, Yuncheng, Shanxi, 044000, P.R. China.
Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China.
State Key Laboratory of Vegetation and Environmental Change, Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100093, China.
Lu, S-B; College of life sciences, Jiangxi Normal University, Nanchang, Jiangxi, 330022, P.R. China.
Huo, Y-L; Centre of Biological and Chemical Experiment, Yuncheng University, Yuncheng, Shanxi, 044000, China.
Guo, B; Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China.
Guan, Z-P; College of Food Science, Shanxi Normal University, Linfen 04100, China.
Wei, Y-H; Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China, Ministry of Education, Northwest University, Xi’an, Shannxi, 710069, P.R. China.

Fuente

Phyton. Revista Internacional de Botánica Experimental; Vol 84, No 2 (2015); 351-357
Phyton, International Journal of Experimental Botany; Vol 84, No 2 (2015); 351-357

Editor

FUNDACIÓN RÓMULO RAGGIO

Fecha

2016-06-16

Derechos

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Idioma

eng

Tipo

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